總膳食纖維檢測試劑盒（Megazyme --Equl）

聯系人：賈東東 13641807736??? QQ：465816918

產品編號：K-TDFR，規(guī)格：200次檢測

1. 簡介：

膳食纖維是指碳水化合物及其相類似物質的總和，包括多糖、寡糖、木質素以及相關的植物物質。主要有纖維素、半纖維素、果膠及親水膠體物質，如樹膠、海藻多糖等組分；另外還包括植物細胞壁中所含有的木質素；不被人體消化酶所分解的物質，如抗性淀粉、抗性糊精、抗性低聚糖、改性纖維素、黏質、寡糖以及少量相關成分，如蠟紙、角質、軟木脂等。

總膳食纖維檢測試劑盒是根據AOAC991.43，AOAC 985.29，AACC32-07和AACC 32-05方法開發(fā)的，也適用于其它方法，如AACC
Method 32-21，AACC method32-06。

2. 檢測原理

脫脂（如大于10%）干燥后的樣品經熱穩(wěn)定a-淀FEN酶、蛋白酶和淀粉葡萄糖苷酶酶解消化，酶解液通過乙醇沉淀、過濾，乙醇和丙酮洗滌殘渣后干燥、稱重，得到總膳食纖維（TDF）殘渣；

酶解液通過直接過濾、熱水洗滌殘渣，干燥后稱重，得到不溶性膳食纖維（IDF）殘渣；

濾液用乙醇沉淀，過濾、干燥、稱重，得到可溶性膳食纖維（SDF）殘渣。

TDF、IDF和SDF的殘渣扣除蛋白質、灰分和空白即得TDF、IDF和SDF含量。

該檢測試劑盒的主要優(yōu)勢在于直接提供高純度的酶，酶的活力是標準化的，而標準化的a-淀FEN酶的活力在測量抗性淀粉是公認的。淀粉葡萄糖苷酶中基本沒有纖維素酶，而其他常用的酶制劑中常含有這種污染物，這將導致溶解和低估β-葡聚糖。該試劑盒提供的酶都是穩(wěn)定的液體，可以保存到試劑盒有效期，并且是直接應用液，不需要使用前再溶解。

3. 用途 賈東東 13641807736 QQ：465816918

適用于檢測谷物、水果、蔬菜和加工食品中的總膳食纖維（TDF）、不溶性

膳食纖維（IDF）和可溶性膳食纖維（SDF）的檢測。

4. 提供試劑及材料 賈東東 13641807736 QQ：465816918

每一個盒中的提供的酶試劑足夠進行200個試驗，如另外需要可單獨訂貨：

Bottle 1 ，1瓶：

熱穩(wěn)定a-淀FEN酶（20mL，~ 3,000 U/mL，Ceralpha method；~ 10,000 U/mL>

品種	數量
β-葡聚糖（大麥）	1.0g
高直鏈玉米淀粉	10.0g
淀粉（小麥）	10.0g
酪蛋白	5.0g
果膠	1.0g

5. 需要的設備和試劑

5.1 設備

A. 高型無導流口燒杯：400mL或600mL

B. 坩堝：具粗面燒結玻璃板，孔徑40-60
μm。清洗后在馬福爐中525℃灰化6小時或過夜，用真空泵除去硅藻土和灰分，室溫下用2%清洗液浸泡1小時，用水和蒸餾水沖洗干凈，用15
mL丙酮沖洗后風干，加1g硅藻土到干燥的坩堝中，在130℃干燥至恒重，在干燥器中冷卻1小時，記下坩堝（包括硅藻土）的重量。

C. 真空溶劑過濾裝置：真空泵或有調節(jié)裝置的抽吸器，1L的抽濾瓶，側壁有抽濾口，以及抽濾瓶配套的橡膠塞。用于酶解液的抽濾。

D. 恒溫振蕩水?。?5-100℃

E. 分析天平：感量0.1mg

F. 天平（臺秤）：4 000g量程，感量0.1g

G. 馬福爐：525±5°C，

H. 烘箱：103±2℃，130±3℃

I. 真空干燥箱

J. 干燥器：二氧化硅或等同干燥劑

K. PH計，具有溫度補償功能。

L. 微量凱氏定氮儀。

M. 移液器，50-200 μL，5 mL，一次性移液吸頭。

N. 計時器。

O. 橡膠刮勺

P. 磁力攪拌器

5.2 試劑

A. 95%乙醇（體積比），

B. 78 %乙醇：取821mL95%乙醇置于容量瓶中，用水稀釋到刻度，混勻。

C. 丙酮

D. 蒸餾水或去離子水

E. 清洗液Micro (International Products Corp.,Trenton,NJ).，配成2%液體

F. MES/TRIS緩沖液（0.05mol/L）:稱取19.52g (MES) (Sigma, M 8250)和14.2 g

(TRIS) (Sigma,T1503)，用1.7L蒸餾水溶解，用6mol/L氫氧化鈉調節(jié)PH至

8.2±0.1，加水稀釋到2L（注意24℃時PH值為8.2，20℃時PH值為8.3，27-28℃

時PH值為8.1）

G. 鹽酸溶液（0.561 mol/L）：取93.5mL 6 mol/L的鹽酸，加入700mL水中，混勻

后用水定容到1L。

H. 氫氧化鈉

I. PH值標準緩沖液：PH值為 4.0，7.0 和10.0。

6. 酶的純化和標準化

6.1 根據AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法，必須確保酶的純度。

6.1.1 淀粉葡萄糖苷酶被木聚糖酶、纖維素酶和果膠酶污染，會低估β-葡聚糖、

阿拉伯木聚糖和果膠的含量。

6.1.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶被污染，會影響抗性淀粉的測量。

6.1.3 蛋白酶被4-β-葡聚糖酶污染，會低估β-葡聚糖的含量。

6.1.4 如不是使用該的酶，請參考下面方法測定。

Test Sample	Activity Tested	Sample Wt（g）	Expected Recovery (%)
Citrus pectin	Pectinasea 『1』	0.1	90-95 『3』
-Glucan (barley)	?-glucanase (cellulase) 『1』	0.1	95-100
Wheat starch	Amylase 『2』	1.0	0-1
Casein	Protease 『2』	0.3	0-2
High amylose starch	Amylase	1.0	~30 『4』

注解：

『1』：沒有酶活力作用。

『2』：最大酶活力作用

『3』：除很少量的柑橘果膠全部沉淀

『4』：含有大量抗性淀粉，準確回收率的數值影響熱穩(wěn)定a-淀粉酶的使用量。

6.2 根據AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法，必須對酶標準化測定，如果不是使用該的酶，請按以下方法測定

6.2.1 淀粉葡萄糖苷酶，0.2 mL，

--- 酶活力表示方法1：淀粉/葡萄糖酶-過氧化物酶法，3300 U/mL，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值4.5時，每分鐘釋放1
μmol葡萄糖所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：對-硝基苯基-b-麥芽糖苷（PNPBM)法，200 U/mL，
1個酶活力單位（1PNP單位））定義為：40°C，有過量萄糖苷酶存在下，每分鐘從對硝基苯基-β-麥芽糖苷釋放1 μmol 對硝基苯基所需要的酶量。

6.2.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶，0.05 mL，

--- 酶活力表示方法1：以淀粉為底物，以Nelson/Somogyi還原糖表示，10000U/mL
，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值6.5時，每分鐘釋放1 μmol葡萄糖所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：對硝基苯基麥芽糖為底物，3,000 U/mL（Ceralpha），1個酶活力單位定義為：40°C，PH值6.5時，每分鐘釋放1
μmol對-硝基苯基所需要的酶量。

6.2.3 蛋白酶，0.10 mL

--- 酶活力表示方法1：酪蛋白測試，350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine
U/mL，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值8.0時，每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出（并溶于三氯乙酸）1 μmol酪氨酸所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：偶氮酪蛋白測試，350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine
U/mL，1個內肽酶活力單位定義為：40°C，PH值8.0時，每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出（并溶于三氯乙酸）1μmol酪氨酸所需要的酶量。該偶氮酪蛋白(貨號：S-AZCAS).

7. 檢測步驟

7.1 試樣制備

準確稱取雙份試樣各1 g，質量差小于0.005g，精確到0.1mg，置于400mL或600mL高型燒杯中，同時制備雙份空白樣，在每個燒杯中加入40 mL
PH值8.2的MES-TRIS緩沖液，磁力攪拌，直到試樣完全分散到緩沖液中。

7.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶酶解：加入50
μL熱穩(wěn)定a-淀粉酶溶液，加蓋鋁箔，置于95-100°C恒溫振蕩水浴中持續(xù)振搖，當所有燒杯全部放入水浴開始計時，反應35分鐘。

7.3 冷卻：將燒杯取出玲卻到60°C，除去鋁箔蓋，用刮勺將燒杯內壁和底部的膠狀物刮下，用10 mL蒸餾水沖洗燒杯壁和刮勺。

7.4 蛋白酶酶解：在每個燒杯中各加入100
μL蛋白酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C恒振蕩水浴中，當燒杯內溫度達到60°C開始計時，持續(xù)反應30分鐘。

7.5 PH值調節(jié)：反應30分鐘后，邊攪拌邊加入0.561 mol/L鹽酸，嚴格控制60°C，用 1mol/L氫氧化鈉溶液或
1mol/L鹽酸溶液，控制PH值在4.5±0.2。

7.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解：在上述溶液中邊攪拌邊加入200
μL淀粉葡萄糖苷酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C恒溫振蕩水浴中，持續(xù)振搖，當燒杯內溫度達到60°C開始計時，反應30分鐘。

8. 測定

8.1 不溶性膳食纖維測定：

8.1.1
過濾洗滌：試樣酶解液全部轉移到坩堝中過濾，殘渣用10mL預熱到70°C的蒸餾水洗滌兩次，合并過濾液，轉移至另一600mL高腳燒杯中，備測可溶性膳食纖維。殘渣分別用10mL
95%乙醇和丙酮洗滌兩次，抽濾去除洗滌液，將坩堝連同殘渣在103°C烘干過夜，將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg，減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.1.2
蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量。另一份在525°C灰化5小時，于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，計算灰分質量。

8.2 可溶性膳食纖維測定

8.2.1 計算濾液體積：將不可溶性膳食纖維過濾后的濾液收集到600mL的高型燒杯中，通過燒杯+濾液總重扣除燒杯質量的方法估算濾液的體積。

8.2.2 沉淀：將濾液加入4倍體積預熱60°C的95%乙醇，或取80g濾液加入320mL預熱60°C的95%乙醇室溫下沉淀1小時。

8.2.3 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質量（精確到0.1mg）。用15mL
78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

8.2.4 洗滌：分別用15mL 78%乙醇、15mL
95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.2.5
蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量，另一份在525°C灰化5小時，于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，計算灰分質量。

8.3 總膳食纖維檢測檢測

8.3.1
沉淀：在每份試樣中加入預熱至60°C的95%乙醇225mL（預熱后的體積，如乙醇的溫度超過65°C，則加入228mL），乙醇與樣液體積比為4：1，取出燒杯，蓋上鋁箔，室溫下沉淀1小時。建議改為：稱量酶解液的質量，用天平加入4倍質量的預熱的60°C的95%乙醇，4°C冰箱中沉淀過夜。

8.3.2 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質量（精確到0.1mg）。用15mL
78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

8.3.3 洗滌：分別用15mL 78%乙醇、15mL
95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.3.4 蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮

法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量。，另一份在525°C灰化5小時，

于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土

干重，計算灰分質量。

9. 計算：

DF（%）=『（R1+R2）/2-p-A-B』/『（M1+M2）/2』*100%

式中：

DF=樣品中膳食纖維含量（TDF、IDF、SDF），%

R1 和R2=雙份樣品殘渣的質量，單位為毫克（mg）

m1 和m2=雙份樣品的質量，單位為毫克（mg）

A=灰分的質量，

P=蛋白的質量

B=空白=(BR1+BR2）/2-BP-BA

BR1 和BR2=雙份試樣空白殘渣的質量

BP=試樣空白蛋白的質量

BA=試樣空白灰分的質量

可以使用該的計算軟件Mega-CalcTM進行自動計算。

方法二

根據AACC method 32-05 和AOAC Method 985.29方法測定

1. 儀器設備和同方法一

2. 試劑和溶液

a. 280±2.0 mL 95 %乙醇

b．10±0.5 mL 78 %乙醇

c. 50±0.5 mL緩沖液

d. 磷酸鹽緩沖液（0.08mol/L，PH值6.0）: 取1.400g Na2HPO4和9.68g NaH2PO4

溶解在700mL蒸餾水中，用水定容到1L，用PH計檢查PH值。

e. 氫氧化鈉溶液（0.275mol/L）：去11g氫氧化鈉溶解在700mL蒸餾水中，冷卻轉

移到容量瓶中，用水定容到1L。

f. 鹽酸溶液（0.325 mol/L）：取 325 mL 1.0 mol/L 鹽酸置于容量瓶中，用水定容

到1L。

3. 樣品準備

總膳食纖維的測定必須是低脂或無脂的干燥樣品，取混勻后的樣品于70°C真

空干燥過夜，干燥器中冷卻，再稱重記錄重量損失，干樣粉碎后過0.3-0.5 mm

篩，若試樣不能加熱，則冷凍干燥后再粉碎過篩。如果是高脂肪樣品(> 10 %)，

取經過干燥的樣品分別用25mL石油醚脫脂三次，干燥后記錄脫脂的質量損失，

最后計算總膳食纖維含量時進行進行校正，粉碎過篩后的干燥試樣放在干燥

器中待用。

4. 分析步驟

準確稱取雙份試樣各1 g，質量差小于0.005g，精確到0.1mg，置于400mL或

600mL高型燒杯中，同時制備雙份空白樣，在每個燒杯中加入50 mL PH值6.0

的磷酸鹽緩沖液，磁力攪拌，直到試樣完全分散到緩沖液中，控制PH值6.0±0.1。

4.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶酶解：加入50 μL熱穩(wěn)定a-淀粉酶溶液，加蓋鋁箔，置于沸騰

水浴中15分鐘，每5分鐘輕輕振蕩一次。當燒杯內的溫度到100°C開始計時，

總共大約30分鐘。

4.3 冷卻：將燒杯取出冷卻到室溫，加入10 mL 0.275mol/L 的氫氧化鈉，調節(jié)

PH值在7.5±0.1。

4.4 蛋白酶酶解：在每個燒杯中各加入100 μL蛋白酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C

恒振蕩水浴中，當燒杯溫度達到60°C開始計時，持續(xù)反應30分鐘。

4.5 冷卻：加入10 mL 0.325 mol/L鹽酸，調節(jié)PH值在4.5±0.2。

4.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解：在上述溶液中邊攪拌邊加入200 μL淀粉葡萄糖苷酶溶

液，加蓋鋁箔，置于60°C恒溫振蕩水浴中，持續(xù)振搖，當燒杯內溫度達到60°C

開始計時，反應20分鐘。

4.7 在每份試樣中加入預熱至60°C的95%乙醇280mL（預熱前的體積），乙醇與樣

液體積比為4：1，取出燒杯，蓋上鋁箔，室溫下沉淀1小時。

4.8 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質

量（精確到0.1mg）。用15mL 78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置

在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的

坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

4.9 洗滌：分別用20mL 78%乙醇洗滌3次、10mL 95%乙醇和10mL丙酮洗滌殘渣

各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜或70°C真空

干燥過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣

和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

4.10 蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定

氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質含量。另一份在525°C灰化5小時，

于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，

計算灰分質量。

計算：

未校正的平均空白殘渣 (UABR)=平均試樣空白殘渣質量，單位為毫克

未校正空白蛋白殘渣(BPR)=UABR x %空白蛋白/100

未校正空白灰分殘渣(BAR)=UABR x %空白灰分/100

校正的空白(CB)= UABR - BPR - BAR

未校正的平均樣品殘渣 (USAR)=平均試樣空白殘渣質量，單位為毫克

未校正樣品蛋白殘渣(SPR)=UABR x %空白蛋白/100

未校正樣品灰分殘渣(SAR)=UABR x %空白灰分/100

校正的樣品(CSR)= USAR-SPR-SAR-CB% TDF= 100 x CSR/樣品質量mg最終的%
TDF是去除了和水分后的總膳食纖維含量。

10、參考文獻：

1. Association of Official Analytical Chemists (1985). Official
Methods of Analysis, 14th ed., 1st suppl. Secs. 43,
A14-43,A20, p.399.

2. Association of Official Analytical Chemists (1986). Changes in methods.
J. Assoc. Off. Anal. Chem., 69:370.

3. Association of Official Analytical Chemists (1987). Changes in methods.
J. Assoc. Off. Anal. Chem., 70:393.

4. Prosky, L., Asp, N.-G., Furda, I., DeVries, J.W., Schweizer, T.F.and
Harland, B.F. (1985). Determination of total dietary fibre in foods and food
products: Collaborative study. J. Assoc. Off. Anal.Chem.,
68:677.

5. Prosky, L., Asp, N.-G., Schweizer, T.F., DeVries, J.W. and Furda,I.
(1988). Determination of insoluble, soluble, and total dietary fibre in

foods and food products. J. Assoc. Off. Anal. Chem.,
71:1017.16

產品編號：K-TDFR，規(guī)格：200次檢測

1. 簡介：

膳食纖維是指碳水化合物及其相類似物質的總和，包括多糖、寡糖、木質素以及相關的植物物質。主要有纖維素、半纖維素、果膠及親水膠體物質，如樹膠、海藻多糖等組分；另外還包括植物細胞壁中所含有的木質素；不被人體消化酶所分解的物質，如抗性淀粉、抗性糊精、抗性低聚糖、改性纖維素、黏質、寡糖以及少量相關成分，如蠟紙、角質、軟木脂等。

總膳食纖維檢測試劑盒是根據AOAC991.43，AOAC 985.29，AACC32-07和AACC 32-05方法開發(fā)的，也適用于其它方法，如AACC
Method 32-21，AACC method32-06。

2. 檢測原理 賈東東 13641807736 QQ：465816918

脫脂（如大于10%）干燥后的樣品經熱穩(wěn)定a-淀FEN酶、蛋白酶和淀粉葡萄糖苷酶酶解消化，酶解液通過乙醇沉淀、過濾，乙醇和丙酮洗滌殘渣后干燥、稱重，得到總膳食纖維（TDF）殘渣；

酶解液通過直接過濾、熱水洗滌殘渣，干燥后稱重，得到不溶性膳食纖維（IDF）殘渣；

濾液用乙醇沉淀，過濾、干燥、稱重，得到可溶性膳食纖維（SDF）殘渣。

TDF、IDF和SDF的殘渣扣除蛋白質、灰分和空白即得TDF、IDF和SDF含量。

該檢測試劑盒的主要優(yōu)勢在于直接提供高純度的酶，酶的活力是標準化的，而標準化的a-淀FEN酶的活力在測量抗性淀粉是公認的。淀粉葡萄糖苷酶中基本沒有纖維素酶，而其他常用的酶制劑中常含有這種污染物，這將導致溶解和低估β-葡聚糖。該試劑盒提供的酶都是穩(wěn)定的液體，可以保存到試劑盒有效期，并且是直接應用液，不需要使用前再溶解。

3. 用途 賈東東 13641807736 QQ：465816918

適用于檢測谷物、水果、蔬菜和加工食品中的總膳食纖維（TDF）、不溶性

膳食纖維（IDF）和可溶性膳食纖維（SDF）的檢測。

4. 提供試劑及材料 賈東東 13641807736 QQ：465816918

每一個盒中的提供的酶試劑足夠進行200個試驗，如另外需要可單獨訂貨：

Bottle 1 ，1瓶：

熱穩(wěn)定a-淀FEN酶（20mL，~ 3,000 U/mL，Ceralpha method；~ 10,000 U/mL>

品種	數量
β-葡聚糖（大麥）	1.0g
高直鏈玉米淀粉	10.0g
淀粉（小麥）	10.0g
酪蛋白	5.0g
果膠	1.0g

5. 需要的設備和試劑

5.1 設備

A. 高型無導流口燒杯：400mL或600mL

B. 坩堝：具粗面燒結玻璃板，孔徑40-60
μm。清洗后在馬福爐中525℃灰化6小時或過夜，用真空泵除去硅藻土和灰分，室溫下用2%清洗液浸泡1小時，用水和蒸餾水沖洗干凈，用15
mL丙酮沖洗后風干，加1g硅藻土到干燥的坩堝中，在130℃干燥至恒重，在干燥器中冷卻1小時，記下坩堝（包括硅藻土）的重量。

C. 真空溶劑過濾裝置：真空泵或有調節(jié)裝置的抽吸器，1L的抽濾瓶，側壁有抽濾口，以及抽濾瓶配套的橡膠塞。用于酶解液的抽濾。

D. 恒溫振蕩水?。?5-100℃

E. 分析天平：感量0.1mg

F. 天平（臺秤）：4 000g量程，感量0.1g

G. 馬福爐：525±5°C，

H. 烘箱：103±2℃，130±3℃

I. 真空干燥箱

J. 干燥器：二氧化硅或等同干燥劑

K. PH計，具有溫度補償功能。

L. 微量凱氏定氮儀。

M. 移液器，50-200 μL，5 mL，一次性移液吸頭。

N. 計時器。

O. 橡膠刮勺

P. 磁力攪拌器

5.2 試劑

A. 95%乙醇（體積比），

B. 78 %乙醇：取821mL95%乙醇置于容量瓶中，用水稀釋到刻度，混勻。

C. 丙酮

D. 蒸餾水或去離子水

E. 清洗液Micro (International Products Corp.,Trenton,NJ).，配成2%液體

F. MES/TRIS緩沖液（0.05mol/L）:稱取19.52g (MES) (Sigma, M 8250)和14.2 g

(TRIS) (Sigma,T1503)，用1.7L蒸餾水溶解，用6mol/L氫氧化鈉調節(jié)PH至

8.2±0.1，加水稀釋到2L（注意24℃時PH值為8.2，20℃時PH值為8.3，27-28℃

時PH值為8.1）

G. 鹽酸溶液（0.561 mol/L）：取93.5mL 6 mol/L的鹽酸，加入700mL水中，混勻

后用水定容到1L。

H. 氫氧化鈉

I. PH值標準緩沖液：PH值為 4.0，7.0 和10.0。

6. 酶的純化和標準化

6.1 根據AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法，必須確保酶的純度。

6.1.1 淀粉葡萄糖苷酶被木聚糖酶、纖維素酶和果膠酶污染，會低估β-葡聚糖、

阿拉伯木聚糖和果膠的含量。

6.1.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶被污染，會影響抗性淀粉的測量。

6.1.3 蛋白酶被4-β-葡聚糖酶污染，會低估β-葡聚糖的含量。

6.1.4 如不是使用該的酶，請參考下面方法測定。

Test Sample	Activity Tested	Sample Wt（g）	Expected Recovery (%)
Citrus pectin	Pectinasea 『1』	0.1	90-95 『3』
?-Glucan (barley)	?-glucanase (cellulase) 『1』	0.1	95-100
Wheat starch	Amylase 『2』	1.0	0-1
Casein	Protease 『2』	0.3	0-2
High amylose starch	Amylase	1.0	~30 『4』

注解：

『1』：沒有酶活力作用。

『2』：最大酶活力作用

『3』：除很少量的柑橘果膠全部沉淀

『4』：含有大量抗性淀粉，準確回收率的數值影響熱穩(wěn)定a-淀粉酶的使用量。

6.2 根據AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法，必須對酶標準化測定，如果不是使用該的酶，請按以下方法測定

6.2.1 淀粉葡萄糖苷酶，0.2 mL，

--- 酶活力表示方法1：淀粉/葡萄糖酶-過氧化物酶法，3300 U/mL，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值4.5時，每分鐘釋放1
μmol葡萄糖所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：對-硝基苯基-b-麥芽糖苷（PNPBM)法，200 U/mL，
1個酶活力單位（1PNP單位））定義為：40°C，有過量萄糖苷酶存在下，每分鐘從對硝基苯基-β-麥芽糖苷釋放1 μmol 對硝基苯基所需要的酶量。

6.2.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶，0.05 mL，

--- 酶活力表示方法1：以淀粉為底物，以Nelson/Somogyi還原糖表示，10000U/mL
，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值6.5時，每分鐘釋放1 μmol葡萄糖所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：對硝基苯基麥芽糖為底物，3,000 U/mL（Ceralpha），1個酶活力單位定義為：40°C，PH值6.5時，每分鐘釋放1
μmol對-硝基苯基所需要的酶量。

6.2.3 蛋白酶，0.10 mL

--- 酶活力表示方法1：酪蛋白測試，350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine
U/mL，1個酶活力單位定義為：40°C，PH值8.0時，每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出（并溶于三氯乙酸）1 μmol酪氨酸所需要的酶量。

--- 酶活力表示方法2：偶氮酪蛋白測試，350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine
U/mL，1個內肽酶活力單位定義為：40°C，PH值8.0時，每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出（并溶于三氯乙酸）1μmol酪氨酸所需要的酶量。該偶氮酪蛋白(貨號：S-AZCAS).

7. 檢測步驟

7.1 試樣制備

準確稱取雙份試樣各1 g，質量差小于0.005g，精確到0.1mg，置于400mL或600mL高型燒杯中，同時制備雙份空白樣，在每個燒杯中加入40 mL
PH值8.2的MES-TRIS緩沖液，磁力攪拌，直到試樣完全分散到緩沖液中。

7.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶酶解：加入50
μL熱穩(wěn)定a-淀粉酶溶液，加蓋鋁箔，置于95-100°C恒溫振蕩水浴中持續(xù)振搖，當所有燒杯全部放入水浴開始計時，反應35分鐘。

7.3 冷卻：將燒杯取出玲卻到60°C，除去鋁箔蓋，用刮勺將燒杯內壁和底部的膠狀物刮下，用10 mL蒸餾水沖洗燒杯壁和刮勺。

7.4 蛋白酶酶解：在每個燒杯中各加入100
μL蛋白酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C恒振蕩水浴中，當燒杯內溫度達到60°C開始計時，持續(xù)反應30分鐘。

7.5 PH值調節(jié)：反應30分鐘后，邊攪拌邊加入0.561 mol/L鹽酸，嚴格控制60°C，用 1mol/L氫氧化鈉溶液或
1mol/L鹽酸溶液，控制PH值在4.5±0.2。

7.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解：在上述溶液中邊攪拌邊加入200
μL淀粉葡萄糖苷酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C恒溫振蕩水浴中，持續(xù)振搖，當燒杯內溫度達到60°C開始計時，反應30分鐘。

8. 測定

8.1 不溶性膳食纖維測定：

8.1.1
過濾洗滌：試樣酶解液全部轉移到坩堝中過濾，殘渣用10mL預熱到70°C的蒸餾水洗滌兩次，合并過濾液，轉移至另一600mL高腳燒杯中，備測可溶性膳食纖維。殘渣分別用10mL
95%乙醇和丙酮洗滌兩次，抽濾去除洗滌液，將坩堝連同殘渣在103°C烘干過夜，將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg，減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.1.2
蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量。另一份在525°C灰化5小時，于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，計算灰分質量。

8.2 可溶性膳食纖維測定

8.2.1 計算濾液體積：將不可溶性膳食纖維過濾后的濾液收集到600mL的高型燒杯中，通過燒杯+濾液總重扣除燒杯質量的方法估算濾液的體積。

8.2.2 沉淀：將濾液加入4倍體積預熱60°C的95%乙醇，或取80g濾液加入320mL預熱60°C的95%乙醇室溫下沉淀1小時。

8.2.3 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質量（精確到0.1mg）。用15mL
78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

8.2.4 洗滌：分別用15mL 78%乙醇、15mL
95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.2.5
蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量，另一份在525°C灰化5小時，于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，計算灰分質量。

8.3 總膳食纖維檢測檢測

8.3.1
沉淀：在每份試樣中加入預熱至60°C的95%乙醇225mL（預熱后的體積，如乙醇的溫度超過65°C，則加入228mL），乙醇與樣液體積比為4：1，取出燒杯，蓋上鋁箔，室溫下沉淀1小時。建議改為：稱量酶解液的質量，用天平加入4倍質量的預熱的60°C的95%乙醇，4°C冰箱中沉淀過夜。

8.3.2 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質量（精確到0.1mg）。用15mL
78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

8.3.3 洗滌：分別用15mL 78%乙醇、15mL
95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

8.3.4 蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定氮

法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質質量。，另一份在525°C灰化5小時，

于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土

干重，計算灰分質量。

9. 計算：

DF（%）=『（R1+R2）/2-p-A-B』/『（M1+M2）/2』*100%

式中：

DF=樣品中膳食纖維含量（TDF、IDF、SDF），%

R1 和R2=雙份樣品殘渣的質量，單位為毫克（mg）

m1 和m2=雙份樣品的質量，單位為毫克（mg）

A=灰分的質量，

P=蛋白的質量

B=空白=(BR1+BR2）/2-BP-BA

BR1 和BR2=雙份試樣空白殘渣的質量

BP=試樣空白蛋白的質量

BA=試樣空白灰分的質量

可以使用該的計算軟件Mega-CalcTM進行自動計算。

方法二

根據AACC method 32-05 和AOAC Method 985.29方法測定

1. 儀器設備和同方法一

2. 試劑和溶液

a. 280±2.0 mL 95 %乙醇

b．10±0.5 mL 78 %乙醇

c. 50±0.5 mL緩沖液

d. 磷酸鹽緩沖液（0.08mol/L，PH值6.0）: 取1.400g Na2HPO4和9.68g NaH2PO4

溶解在700mL蒸餾水中，用水定容到1L，用PH計檢查PH值。

e. 氫氧化鈉溶液（0.275mol/L）：去11g氫氧化鈉溶解在700mL蒸餾水中，冷卻轉

移到容量瓶中，用水定容到1L。

f. 鹽酸溶液（0.325 mol/L）：取 325 mL 1.0 mol/L 鹽酸置于容量瓶中，用水定容

到1L。

3. 樣品準備

總膳食纖維的測定必須是低脂或無脂的干燥樣品，取混勻后的樣品于70°C真

空干燥過夜，干燥器中冷卻，再稱重記錄重量損失，干樣粉碎后過0.3-0.5 mm

篩，若試樣不能加熱，則冷凍干燥后再粉碎過篩。如果是高脂肪樣品(> 10 %)，

取經過干燥的樣品分別用25mL石油醚脫脂三次，干燥后記錄脫脂的質量損失，

最后計算總膳食纖維含量時進行進行校正，粉碎過篩后的干燥試樣放在干燥

器中待用。

4. 分析步驟

準確稱取雙份試樣各1 g，質量差小于0.005g，精確到0.1mg，置于400mL或

600mL高型燒杯中，同時制備雙份空白樣，在每個燒杯中加入50 mL PH值6.0

的磷酸鹽緩沖液，磁力攪拌，直到試樣完全分散到緩沖液中，控制PH值6.0±0.1。

4.2 熱穩(wěn)定a-淀粉酶酶解：加入50 μL熱穩(wěn)定a-淀粉酶溶液，加蓋鋁箔，置于沸騰

水浴中15分鐘，每5分鐘輕輕振蕩一次。當燒杯內的溫度到100°C開始計時，

總共大約30分鐘。

4.3 冷卻：將燒杯取出冷卻到室溫，加入10 mL 0.275mol/L 的氫氧化鈉，調節(jié)

PH值在7.5±0.1。

4.4 蛋白酶酶解：在每個燒杯中各加入100 μL蛋白酶溶液，加蓋鋁箔，置于60°C

恒振蕩水浴中，當燒杯溫度達到60°C開始計時，持續(xù)反應30分鐘。

4.5 冷卻：加入10 mL 0.325 mol/L鹽酸，調節(jié)PH值在4.5±0.2。

4.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解：在上述溶液中邊攪拌邊加入200 μL淀粉葡萄糖苷酶溶

液，加蓋鋁箔，置于60°C恒溫振蕩水浴中，持續(xù)振搖，當燒杯內溫度達到60°C

開始計時，反應20分鐘。

4.7 在每份試樣中加入預熱至60°C的95%乙醇280mL（預熱前的體積），乙醇與樣

液體積比為4：1，取出燒杯，蓋上鋁箔，室溫下沉淀1小時。

4.8 過濾：在干燥的坩堝中加入1g硅藻土，70°C真空干燥至恒重，記錄坩堝的質

量（精確到0.1mg）。用15mL 78%乙醇將硅藻土潤濕，并用真空溶劑過濾裝置

在抽真空條件下，使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉移至對應的

坩堝中，抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉至坩堝中。

4.9 洗滌：分別用20mL 78%乙醇洗滌3次、10mL 95%乙醇和10mL丙酮洗滌殘渣

各兩次，抽濾去除洗滌液后，將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜或70°C真空

干燥過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時，稱重（包括坩堝、膳食纖維殘渣

和硅藻土），精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重，計算殘渣質量。

4.10 蛋白質和灰分測定：稱完質量的殘渣和硅藻土的混合物，一份用凱氏定

氮法，以N×6.25為換算系數，計算蛋白質含量。另一份在525°C灰化5小時，

于干燥器中冷卻，精確稱量坩堝總量（精確至0.1mg）減去坩堝和硅藻土干重，

計算灰分質量。

計算：

未校正的平均空白殘渣 (UABR)=平均試樣空白殘渣質量，單位為毫克

未校正空白蛋白殘渣(BPR)=UABR x %空白蛋白/100

未校正空白灰分殘渣(BAR)=UABR x %空白灰分/100

校正的空白(CB)= UABR - BPR - BAR

未校正的平均樣品殘渣 (USAR)=平均試樣空白殘渣質量，單位為毫克

未校正樣品蛋白殘渣(SPR)=UABR x %空白蛋白/100

未校正樣品灰分殘渣(SAR)=UABR x %空白灰分/100

校正的樣品(CSR)= USAR-SPR-SAR-CB% TDF= 100 x CSR/樣品質量mg最終的%
TDF是去除了和水分后的總膳食纖維含量。

10、參考文獻：

1. Association of Official Analytical Chemists (1985). Official
Methods of Analysis, 14th ed., 1st suppl. Secs. 43,
A14-43,A20, p.399.

2. Association of Official Analytical Chemists (1986). Changes in methods.
J. Assoc. Off. Anal. Chem., 69:370.

3. Association of Official Analytical Chemists (1987). Changes in methods.
J. Assoc. Off. Anal. Chem., 70:393.

4. Prosky, L., Asp, N.-G., Furda, I., DeVries, J.W., Schweizer, T.F.and
Harland, B.F. (1985). Determination of total dietary fibre in foods and food
products: Collaborative study. J. Assoc. Off. Anal.Chem.,
68:677.

5. Prosky, L., Asp, N.-G., Schweizer, T.F., DeVries, J.W. and Furda,I.
(1988). Determination of insoluble, soluble, and total dietary fibre in

foods and food products. J. Assoc. Off. Anal. Chem.,
71:1017.16